リアルタイムPCRの原理

リアルタイムPCR 法とは、PCR の増幅量をリアルタイムでモニターし解析する方法であり、電気泳動が不要で迅速性と定量性に優れています。この方法にはサーマルサイクラーと分光蛍光光度計を一体化したリアルタイムPCR専用の装置が必要です。
リアルタイムPCR による定量の原理を下図に示します。段階希釈した既知量のDNAをスタンダードとしてPCRを行います。 これをもとに、増幅が指数関数的に起こる領域で一定の増幅産物量になるサイクル数（threshold cycle；Ct 値）を横軸に、初発のDNA量を縦軸にプロットし、検量線を作成します。 未知濃度のサンプルについても、同じ条件下で反応を行い、Ct値を求めます。この値と検量線から、サンプル中の目的のDNA 量を測定します。 通常、リアルタイムPCRのモニターは蛍光試薬を用いて行います。蛍光モニター法にはいくつかの方法があります。

1) インターカレータ−法

二本鎖DNAに結合することで蛍光を発する試薬（インターカレーター：SYBR^® Green I）をPCR 反応系に加える方法です。 インターカレーターは、PCR反応によって合成された二本鎖DNA に結合し、励起光の照射により蛍光を発します。 この蛍光強度を検出することにより、増幅産物の生成量をモニターできます。 また、増幅DNAの融解温度を測定することもできます。
（Perfect Real Timeサポートシステムのプライマーは、SYBR^® Green Iによるインターカレーター法で検出するリアルタイムRT-PCR用です。）

2) TaqManプローブ法

5′末端を蛍光物質（FAMなど）で、3′末端をクエンチャー物質（TAMRA など）で修飾したオリゴヌクレオチド（TaqManプローブ）をPCR反応系に加える方法です。 TaqManプローブは、アニーリングステップで鋳型DNAに特異的にハイブリダイズしますが、プローブ上にクエンチャーが存在するため、励起光を照射しても蛍光の発生は抑制されます。 伸長反応ステップのときに、Taq DNA ポリメラーゼのもつ5′→ 3′エキソヌクレアーゼ活性により、鋳型にハイブリダイズしたTaqMan^® プローブが分解されると、蛍光色素がプローブから遊離し、クエンチャーによる抑制が解除されて蛍光が発せられます。

3) サイクリングプローブ法

サイクリングプローブ法は、RNAとDNAからなるキメラプローブとRNase Hの組み合わせによる高感度な検出方法で、増幅中や増幅後の遺伝子断片の特定配列を効率良く検出することができます。プローブは5′端が蛍光物質（リポーター）で、3′端が蛍光を消光する物質（クエンチャー）で標識されています。このプローブは、インタクトな状態ではクエンチングにより強い蛍光を発することはありませんが、配列が相補的な増幅産物とハイブリッドを形成した後にRNaseH によりRNA 部分が切断されると、強い蛍光を発するようになります。この蛍光強度を測定することで、増幅産物の量をモニターすることができます。 サイクリングプローブのRNA付近にミスマッチが存在すると、RNaseHによる切断は起こりませんので、SNPsタイピングなどに最適です。